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如何科學正確地使用凍存管呢？
凍存管的使用是一門學問，并不是打開液氮罐、放入凍存管、關上液氮罐這樣簡單的三部曲可以完成的。科學正確地使用凍存管，可以避免樣本的損失，并保護試驗人員的安全。
凍存管有IATA航空運輸協會標準測試證書，常規儲存細胞培養物，組織樣品，微生物樣品(如病毒，細菌，酵母，真菌，孢子等)，人源或動物源其它生物樣品(如血液，血清，精液，抗體，RNA, DNA和蛋白樣本)，不適合存儲再生醫學樣本。
冷凍步驟:
用預熱的PBS溶液洗滌細胞，吸取溶液，含有胰蛋白酶和EDTA的溶液覆蓋細胞(薄薄的液層足夠，胰蛋白酶和EDTA的濃度需要根據細胞系確定)。
37℃孵育細胞3-5分鐘。
細胞從底部脫離之后，終止孵育，加入含有血清的培養基，用移液器輕輕地懸浮細胞。
離心細胞懸液(500 x g, 5分鐘)，用含有血清的培養基重新懸浮。
細胞計數。
離心細胞懸液(500 x g, 5分鐘)，去除上清液，用適量體積的含有血清的培養基重新懸浮細胞。
以1:1體積比混合細胞和凍存液(60%培養基，20%胎牛血清，20% DMSO)，然后轉移到凍存管中。凍存的細胞密度為 1-5×106 個/毫升。
含有細胞的凍存管建議以−1 K / min 的速率降溫，可以將凍存管置于−70℃含有異丙醇的容器中。如果凍存管存儲其他樣品，可以直接放置在−20℃，−70℃或者液氮的氣相。為了確保樣品冷凍均勻，4 mL和5 mL的凍存管需要先置于在−20℃冰箱過夜，然后再轉移到−70℃或者液氮的氣相。
然后轉移凍存管到液氮罐。為了避免污染(如支原體)和安全考慮，請將凍存管置于液氮的氣相，切勿置于液相。
解凍步驟:
從液氮罐取出凍存的細胞后立即置于37℃水浴搖晃Cryo.sTM凍存管1-2分鐘。解凍過程需要越快越好。
轉移解凍的細胞于15 mL離心管，立即用大量的含有血清的細胞培養基混勻。
500 x g離心細胞5 分鐘，去除上清液，用適量的含有血清的細胞培養基重新懸浮細胞，然后轉移到細胞培養瓶。
按照建議的細胞濃度接種。
接下來的12小時細胞進入靜默期。
間隔24小時和48小時更換培養基
如果細胞感染了病毒，也可以參考以上步驟進行冷凍存儲和解凍的操作。
凍存管安全操作建議
凍存管用來存儲樣品，只能置于液氮氣相或冰箱。禁止凍存管浸沒于液氮液相，否則液氮可能滲入凍存管。因此，解凍時，蒸發的液氮產生高壓力，終導致凍存管炸裂，并且還將導致感染物質釋放。
因此，操作凍存管時需要佩戴合適的個人安全防護措施，如穿戴安全護服、佩戴護目鏡、在安全櫥操作。
進行冷凍保存時，凍存管需要緩慢地降溫至冷凍溫度。如果不是緩慢地降溫到冷凍溫度，將導致冰塞形成(如在凍存管頂部)，冰塞將阻礙液體形成凝固，將導致高壓力危險和后續的爆管風險。
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